Tuberculose Bactériologie |
| Créé le 08/03/2000 |
Auteur : A. Taytard |
(Mis à jour le 03/04/2008) |
| Révisé le 03/04/2008 |
J. Texier-Maugein |
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1/ Il n'y a pas de tuberculose sans BK
Il faut mettre en œuvre tous les moyens permettant de trouver le BK
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Examen
direct : bacilles acido-alcoolo-résistants |
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Devant tout sujet qui crache et qui est suspect de tuberculose on prescrit
prélèvement
de l'expectoration examen
direct culture antibiogramme |
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| 2/ Ne pas retrouver le BK n'exclut pas la tuberculose |
Quand la condition 1 a été remplie on traite chaque fois qu'il y a forte probabilité et/ou
risque de gravité |
Devant
une miliaire ou une méningite qui ne fait pas sa preuve "suspecter une tuberculose, c'est l'adopter" |
Tests de détection de l'interféron
g
2 tests commercialisés :
QuantiFERON-TBâ :
ESAT 6 ; CFP 10 ; Tb7.7 (test ELISA simple)
T-SPOT.TBâ :
ESAT 6 ; CFP 10 (laboratoire spécialisé)
Mise en évidence in vitro de la réponse immunitaire vis à vis
de M
tuberculosis : après stimulation par des protéines mycobactériennes
les lymphocytes T spécifiques de M tuberculosis sécrètent
des cytokines de type TH1 dont l'IFNg.
3 protéines retenues : Early secreted antigenic target 6kDa protein
(ESAT-6), Culture filtrate protein 10 (CFP-10), tuberculosis 7.7 (Tb 7.7).
Ces protéines ne sont pas retrouvées avec le BCG, existent avec M
kansasii,
M szulgai, M marinum et quelquefois avec M leprae ;
elles sont absentes des autres mycobatéries.
Avantages
pas de 2ème consultation pour interpréter le résultat
du test (IDR)
différencie M tuberculosis et BCG, M tuberculosis et M avium
utilisable chez les patients VIH même si CD4 < 200 c/µl (T.SPOT-TBâ)
forte valeur prédictive
négative (Kobashi, 2006), réduisant le nombre de patients à traiter
lors de dépistages (Diel, 2007).
Inconvénient
nécessite un laboratoire équipé
croisement possible entre M tuberculosis et quelques autres mycobactéries
Utile
dans quatre indications (HAS)
:
diagnostic
de tuberculose infection latente uniquement chez les adultes (de plus de 15
ans) ;
lors
de leur embauche, pour les professionnels de santé ou les personnes
travaillant dans des services à risques dans les mêmes conditions
que celles préconisées par les recommandations sur l’IDR ;
aide
au diagnostic des formes extra pulmonaires de la tuberculose-maladie ;
avant
la mise en route d’un traitement
anti-TNF alpha dans les mêmes
conditions que les recommandations de l’Agence française de sécurité sanitaire
des produits de santé.
Ce test trouve
sa place en remplacement de l’IDR, pour ces quatre indications.
S’il est positif,
sous réserve des autres éléments disponibles, il pourra
mener à la mise en route d’un traitement anti-tuberculeux.
Réf
Chee CBE, KhinMar KW, Gan SH, Barkham TMS, Pushparani M, Wang YT. Latent
Tuberculosis Infection Treatment and T-Cell Responses to Mycobacterium
tuberculosis–specific Antigens. Am J Respir Crit Care Med 2007;175:282-7
Diel R, Wrighton-Smith P, Zellweger JP. Cost-effectiveness of interferon-g
release assay testing for the treatment of latent tuberculosis. Eur
Respir J 2007;30:321-32
HAS.
Test de détection de la production d'interféron g pour
le diagnostic des infections tuberculeuses. décembre 2006
Kobashi Y, Obase Y, Fukuda M, Yoshida K, Miyashita N, Oka M. Clinical
reevaluation of the QuantiFERON TB-2G test as a diagnostic method for
differentiating active tuberculosis from nontuberculous mycobacteriosis.
Clin Infect Dis 2006;43:1540-6
Mazurek GH, Jereb J, Lobue P, Iademarco MF, Metchock B, Vernon A. Guidelines
for using the QuantiFERON-TB Gold test for detecting Mycobacterium
tuberculosis infection, United States. MMWR Recomm Rep 2005;54:49-55 |
Nouveaux tests en mycobacteriologie
Identification du complexe tuberculosis à partir d’une culture
Technique d’immunochromatographie qui permet l’identification du complexe tuberculosis à partir d’une culture en milieu liquide ou solide en 15 minutes. Technique basée sur la détection de la fraction protéique mycobactérienne MPT64 sécrétée pendant la culture.
Trois kits commercialisés, BD MGIT TBc identification test, SD Bioline TB Ag MPT64 et OREA MPT64. La concordance avec les autres techniques d’identification varie de 99 à 100 % selon les études.
Détection du complexe tuberculosis à partir de l’échantillon direct en 2h30
Technique GenoQuick MTB. Les différentes étapes du test sont :
l’extraction d’ADN, réalisée en 20 minutes à l’aide du kit GenoLyse,
l’amplification (2 heures)
Le produit d’amplification fixé sur une bandelette est visualisé grâce à un marquage à l’or en 10 minutes.
Détection du complexe tuberculosis et de la résistance à l’antibiotique à partir de l’échantillon direct
Il existe actuellement deux techniques commercialisées
Xpert MTB/Rif : technique de PCR en temps réel
Détection du complexe tuberculosis
Détection de la résistance à la rifampicine par détection des mutations les plus fréquentes. La cible est une région de 81pb du gène rpoB.
Peut être réalisée à partir des échantillons positifs à l’examen direct, mais aussi des échantillons négatifs. Dans le 1er cas la sensibilité est proche de 100 % dans le 2ème cas de 70 % seulement (Boehme, 2010 ; Helb, 2010).
Résultats obtenus en 2H (préparation de l’échantillon et amplification).
Il s’agit d’une technique très facile à mettre en œuvre dans les laboratoires de routine, mais qui demande un appareillage particulier et le coût du test est élevé.
GenoType MTDR plus et GenoType MTDR sl
Détection du complexe tuberculosis
Détection de la résistance à la rifampicine, INH, fluoroquinolones, aminosides et éthambutol par détection des mutations les plus fréquentes.
Peut être réalisée à partir des échantillons positifs à l’examen direct ou des cultures en milieu liquide ou solide.
Résultats obtenus en 5 H (préparation de l’échantillon, amplification et hybridation). Les taux de détection de résistance à la rifampicine et à l’INH sont respectivement de 97 et 90 % à partir des échantillons cliniques (Hilleman, 2007)
Cette technique demande plus d’heures et de manipulation, mais son coût est peu élevé.
Réf
Boehme CC, Nabeta P, Hillemann D, Nicol MP, Shenai S, Krapp F, Allen J, Tahirli R, Blakemore R, Rustomjee R, Milovic A, Jones M, O'Brien SM, Persing DH, Ruesch-Gerdes S, Gotuzzo E, Rodrigues C, Alland D, Perkins MD. Rapid molecular detection of tuberculosis and rifampin resistance. N Engl J Med. 2010;363:1005-15
Helb D, Jones M, Story E, Boehme C, Wallace E, Ho K, Kop J, Owens MR, Rodgers R, Banada P, Safi H, Blakemore R, Lan NT, Jones-López EC, Levi M, Burday M, Ayakaka I, Mugerwa RD, McMillan B, Winn-Deen E, Christel L, Dailey P, Perkins MD, Persing DH, Alland D. Rapid detection of Mycobacterium tuberculosis and rifampin resistance by use of on-demand, near-patient technology. J Clin Microbiol. 2010;48:229-37
Hillemann D, Rüsch-Gerdes S, Richter E Evaluation of the GenoType MTDRplus Assay for rifampin and isoniazid susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis strains and clinical specimens. J Clin Microbiol 2007;45:2635-40
Truffot-Pernot C, Veziris N. Les tests bactériologiques de la tuberculose maladie : standards et perspectives. Rev Mal Respir 2011;28:1034-47
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Génotypie
de Mycobacterium tuberculosis
Virulence
de Mycobactérium tuberculosis
Conflits d’intérêts : les auteurs n’ont pas transmis de conflits d’intérêts concernant les données publiées dans ce texte.
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